Biología y Anatomía

Cromatografía de pigmentos fotosínteticos MATERIALES  Embudo  Pipetas  Placa de Petri  Mortero Tijeras  Papel de filtro  Alcohol etílico de 96º Hojas de plantas Tiza METODOLOGÍA Coloca en el mortero las hojas. Añade alcohol etílico. Tritura hasta lograr que los pigmentos sean disueltos por el alcohol. El líquido presentará un intenso color verde. Filtra el contenido del mortero a través de un papel en el embudo y vierte una pequeña parte del filtrado en una placa de Petri. Corta un trozo de papel de filtro (15x10), dóblala en codo para que se sostenga verticalmente y colócalo, junto con un pedazo de tiza, sobre el filtrado sin que toque las paredes de la placa. Déjalo en esta posición un par de horas Observa el resultado de la separación de pigmentos en tu papel de filtro y en la tiza. RESULTADOS

Solubilidad MATERIALES  Tubos de ensayo Gradilla Varillas de vidrio Mechero Pipetas Agua Acetona Aceite de oliva METODOLOGÍA Poner 2ml de aceite en dos tubos de ensayo. Añadir a uno de ellos 2ml de agua y al otro 2ml de éter u otro disolvente orgánico, Agitar fuertemente ambos tubos y dejar reposar. Observar los resultados: Se verá cómo el aceite se ha disuelto en el éter y, en cambio no lo hace en el agua y el aceite subirá debido a su menor densidad. RESULTADOS CONCLUSIONES: Los lípidos son insolubles en agua. Por el contrario, las grasas son solubles en disolventes orgánicos, como el éter, cloroformo, acetona, etc.

Tinción MATERIALES  Tubos de ensayo Gradilla Varillas de vidrio Mechero Pipetas Solución de Sudán III Tinta roja Acetona METODOLOGÍA Disponer en una gradilla 2 tubos de ensayo colocando en ambos 2ml de aceite. Añadir a uno de los tubos 4-5 gotas de solución alcohólica de Sudán III. Al otro tubo añadir 4-5 gotas de tinta roja. Agitar ambos tubos y dejar reposar. Observar los resultados: en el tubo con Sudán III todo el aceite tiene que aparecer teñido, mientras que en el tubo con tinta, ésta se irá al fondo y el aceite no estará teñido. RESULTADOS

COAGULACIÓN DE LAS PROTEÍNAS MATERIALES Tubos de ensayo Gradilla Mechero Vasos de precipitados Pipetas Solución de HCl concentrado Alcohol etílico Solución de SO4Cu al 1% NaOH al 20% Clara de huevo o leche Solución de albúmina al 1-2% METODOLOGÍA Colocar en tres tubos de ensayo una pequeña cantidad de clara de huevo (puede diluirse en un poco de agua para obtener una mezcla espesa) o 2-3 ml de leche. Calentar uno de los tubos al baño María, añadir a otro 2-3ml de HCl concentrado y al tercero 2‑3ml de alcohol etílico. Observar los resultados. CONCLUSIONES: Las proteínas debido al gran tamaño de sus moléculas forman coágulos al ser calentadas a temperaturas superiores a 70ºC o al ser tratadas con soluciones salinas, ácidos, alcohol, etc.  La coagulación de las proteínas es un proceso irreversible

SAPONIFICACIÓN: Reconocimiento de lípidos MATERIALES Tubos de ensayo Gradilla Varillas de vidrio Mechero Vasos de precipitados Pipetas Solución de NaOH al 20% Solución de Sudán III Tinta china roja Éter, cloroformo o acetona Aceite de oliva FUNDAMENTO Las grasas reaccionan en caliente con el hidróxido sódico descomponiéndose en los dos elementos que las integran: glicerina y ácidos grasos. Éstos se combinan con los iones sodio o potasio del hidróxido para dar jabones, que son en consecuencia las sales sódicas de los ácidos grasos. En los seres vivos, la hidrólisis de los triglicéridos se realiza mediante la acción de enzimas específicos (lipasas) que dan lugar a la formación de ácidos grasos y glicerina. METODOLOGÍA Colocar en un tubo de ensayo 2ml de aceite y 2ml de NaOH al 20%. Agitar enérgicamente y colocar el tubo al baño María de 20 a 30 minutos. Pasado este tiempo, se pueden observar en el tubo 3 fases: una inferior clara