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Práctica 11: Disección del corazón

Disección del corazón MATERIALES Corcho Bisturí Pinzas Tijeras Punzón Guantes de látex Corazón de cerdo METODOLOGÍA Antes de iniciar la disección lavamos el corazón con abundante agua para sacar los restos de sangre. Anatomía  externa: Observamos que el corazón tiene una cara anterior que es convexa y otra cara posterior más plana.  Colocamos el corazón apoyado sobre la cara plana.  Entre los dos ventrículos se observa el surco anterior, que recorre el corazón. Anatomía interna: Hacemos un corte vertical a la izquierda del surco anterior y llegamos al ventrículo derecho, lo diferenciamos porque sus paredes son más finas. Podemos apreciar la válvula tricúspide y los pilares tendinosos que la sujetan. Hacemos un corte vertical a la derecha del surco anterior y llegamos al ventrículo izquierdo, lo diferenciamos porque sus paredes son mucho más gruesas. Podemos apreciar la válvula mitral y los pilares tendinosos. Introducimos unas pinzas por la a
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Práctica 14: Nos medimos la tensión

Medición de presión arterial La tensión o presión sanguínea, es la presión existente en los vasos sanguíneos.  Se mide en tres valores: La presión sistólica: Presión cuando el corazón bombea sangre. La presión diastólica: Presión cuando el corazón está en reposo. Pulsaciones por minuto MATERIALES Tensiómetro automático  que se compone de banda del brazo, estetoscopio y una bomba con medidor.  METODOLOGÍA Reposar antes de empezar a medir la tensión y durante la medición no puedes hablar ni hacer movimientos.  Se coloca la banda alrededor de la parte superior del brazo.  No debe quedar muy ajustado. RESULTADOS En la mayoría de nosotros tanto las pulsaciones como la presión estaba en las medidas normales para personas de nuestra eada en las mismas condiciones físicas

Práctica 13: Disección de calamar

Disección de calamar  MATERIALES Pinzas Tijeras Tabla de corcho Calamar  Bisturí  Punzón METODOLOGÍA    Corte ventral desde el sifón  metemos las pinzas por la boca y sacamos los dos picos córneos  Observamos el saco de tinta y lo sacamos Observamos las branquias Extraemos el cristalino del ojo   Tiene 8 tentáculos pequeños y 2 grandes RESULTADOS Sistema nervioso Pico de loro Ventosas de los tentáculos Cristalino del ojo  

Práctica 12: Disección de un crustáceo decápodo

Disección de un crustáceo decápodo  MATERIAL Gamba (frescos para estudiar el interior; cocidos para ver los apéndices) Pinzas Lupa Corcho METODOLOGÍA Apoya el organismo sobre su cara ventral.  Cortar la membrana que une el caparazón del cefalotórax al primer segmento abdominal.Ç Hacer dos cortes paralelos a los lados del cefalotórax, desde el borde posterior hasta detrás de los ojos. Realizamos un corte longitudinal de ojo a ojo y levantamos la pieza.  Eliminar la capa de tejido conjuntivo para ver mejor las estructuras Hacer dos cortes laterales detrás de los ojos para mirar las cámaras branquiales. Realizar dos cortes laterales a lo largo del abdomen.  OBJETIVOS Extraer los órganos internos y los músculos del abdomen.  Se podrán disfrutar las estructuras nerviosas.

Práctica 10: Disección de un mejillón

Disección de un mejillón  MATERIALES  Mejillones (hervidos). Placa de corcho. Pinzas. Tijeras Alfileres. Ácido clorhídrico (opcional). METODOLOGÍA 1º. Primero vamos a ver cuáles son las partes de la concha externa. 2º. Luego estudiaremos la cara de la concha interna, para ello, con cuidado, abrimos el mejillón cocido. 3º. Después con las tijeras  y las pinzas sacamos el cuerpo y lo colocamos sobre el corcho orientado en vista lateral. 4º. Se abren los dos lóbulos del manto y se clava con alfileres a la placa de corcho. OBJETIVOS -Reconocer estructuras anatómicas externas e internas del mejillón. -Aprender a manejar con seguridad las herramientas de disección.

Práctica 9: Extracción de ADN

Extracción de ADN MATERIALES Un trozo pequeño de hígado de pollo Mortero Vaso de precipitados 50 mL de agua fría Sal común  8 mL de fairy   Etanol frío  Colador  Varilla de vidrio  Tubo de ensayo  METODOLOGÍA Poner el hígado en el mortero y machacar después añadir agua y un poco de arena para terminar de machacar. Colar la mezcla con un colador. Pasar el filtrado a un vaso de precipitados y añadirle una pizca de sal y mezclarlo. Añadir el detergente y remover sin que salga espuma. Dejar reposar 5 minutos. Pasar la mezcla a dos tubos de ensayo. Añadir un poco de zumo de piña. Verter alcohol por la pared para que no se mezcle con la muestra. Deben quedar dos fases, la de alcohol, arriba y la solución del hígado bajo  RESULTADOS Primero se machaca la muestra para romper los tejidos y separar las células. La sal junto con el detergente rompe la pared celular, la membrana plasmática y la membrana nuclear. El zumo de piña tiene enzimas llamadas proteasas, qu

Práctica 8: Cromatografía de pigmentos fotosínteticos

Cromatografía de pigmentos fotosínteticos MATERIALES  Embudo  Pipetas  Placa de Petri  Mortero Tijeras  Papel de filtro  Alcohol etílico de 96º Hojas de plantas Tiza METODOLOGÍA Coloca en el mortero las hojas. Añade alcohol etílico. Tritura hasta lograr que los pigmentos sean disueltos por el alcohol. El líquido presentará un intenso color verde. Filtra el contenido del mortero a través de un papel en el embudo y vierte una pequeña parte del filtrado en una placa de Petri. Corta un trozo de papel de filtro (15x10), dóblala en codo para que se sostenga verticalmente y colócalo, junto con un pedazo de tiza, sobre el filtrado sin que toque las paredes de la placa. Déjalo en esta posición un par de horas Observa el resultado de la separación de pigmentos en tu papel de filtro y en la tiza. RESULTADOS